Мембранопротекторные свойства липидного экстракта из морской бурой водоросли Sargassum pallidum (Turner) C. Agardh в условиях экспериментального стресса

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Исследовано влияние липидного экстракта, выделенного из таллома морской бурой водоросли Sargassum pallidum, и коммерческого препарата сравнения «Омега-3» на биохимические показатели мембран эритроцитов крыс при экспериментальном стрессе (вертикальная фиксация за дорсальную шейную складку на 24 ч). Стрессовое воздействие сопровождалось увеличением диаметра и среднего объема эритроцитов, снижением осмотической резистентности к изменению концентрации NaCl. В мембране эритроцитов отмечалось увеличение уровня холестерина и изменение количественных характеристик фракций фосфолипидов и входящих в их состав жирных кислот, что обусловило появление модифицированных молекулярных фракций фосфолипидов. Проведена коррекция полученных изменений липидным экстрактом S. pallidum и препаратом сравнения «Омега-3». По своей биологической эффективности экстракт саргассума не уступал эталонному препарату «Омега-3», но по способности восстанавливать размерные характеристики эритроцитов, а также соотношению фосфолипидных фракций в мембранах эритроцитов и величин их жирнокислотного состава превосходил таковой. Фармакологический эффект липидного экстракта саргассума, по нашему мнению, обусловлен более широким спектром нейтральных и фосфолипидных фракций, полиненасыщенных жирных кислот семейств n-3 и n-6, что обеспечивает эффективную репарацию мембран эритроцитов. Таллом морской бурой водоросли может использоваться как сырье для получения препаратов со стресс-протекторными и липид-корригирующими свойствами.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Н. Ф. Кушнерова

Тихоокеанский океанологический институт им. В.И. Ильичева ДВО РАН

Автор, ответственный за переписку.
Email: natasha50@mail.ru
Россия, Владивосток, 690041

С. Е. Фоменко

Тихоокеанский океанологический институт им. В.И. Ильичева ДВО РАН

Email: natasha50@mail.ru
Россия, Владивосток, 690041

В. Г. Спрыгин

Тихоокеанский океанологический институт им. В.И. Ильичева ДВО РАН

Email: natasha50@mail.ru
Россия, Владивосток, 690041

Т. В. Момот

Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова МЗ РФ (Сеченовский Университет)

Email: natasha50@mail.ru
Россия, Москва, 119991

Список литературы

  1. Селье Г. 1960. Очерки об адаптационном синдроме. М.: Медгиз. 254 с.
  2. Селье Г. 1982. Стресс без дистресса. М.: Прогресс. 124 с.
  3. Меньщикова Е.Б., Зенков Н.К., Ланкин В.З., Бондарь И.А., Труфакин В.А. 2008. Окислительный стресс: патологические состояния и заболевания. Новосибирск: АРТА. 284 с.
  4. Момот Т.В., Кушнерова Н.Ф., Рахманин Ю.А. 2016. Профилактика нарушения биохимических показателей в крови крыс при экспериментальном стрессе. Гиг. санитар. 7, 678-681.
  5. Хадарцев А.А., Наумова Э.М., Валентинов Б.Г., Грачев Р.В. 2022. Эритроциты и окислительный стресс. Вестн. нов. мед. технол. 29 (1), 93–100.
  6. Caro A.A., Cederbaum A.I. 2004. Oxidative stress, toxicology and pharmacology of CYP2E1. Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol. 44, 27–42.
  7. Миндукшев И.В., Судницына Ю.С., Скверчинская Е.А., Андреева А.Ю., Добрылко И.А., Сенченкова Е.А., Кривченко А.И., Гамбарян С.П. 2019. Ингибирование реакций эритроцитов на осмотический, аммонийный и окислительный стресс в условиях гипоксии. Биол. мембраны. 36 (5), 358–372.
  8. Фоменко С.Е., Кушнерова Н.Ф., Момот Т.В. 2017. Изменение липидного состава мембран эритроцитов у водолазов, работающих на малых и средних глубинах. Мед. труда и пром. экол. 3, 41–46.
  9. Orrico F., Laurance S., Lopez A.C., Lefevre S.D., Thomson L., Moller M.N., Ostuni M.A. 2023. Oxidative stress in healthy and pathological red blood cells. Biomolecules. 13, 1262.
  10. Hashemi S., Amani R., Cheraghian B., Neamatpour S. 2020. Stress and anxiety levels are associated with erythrocyte fatty acids content in young women. Iran J. Psychiatry. 15 (1), 47–54.
  11. Horobin J.T., Sabapathy S., Simmonds M.J. 2020. Red blood cell tolerance to shear stress above and below the subhemolytic threshold. Biomech. Model. Mechanobiol. 19, 851–860.
  12. Besedina N.A., Skverchinskaya E.A., Shmakov S.V., Ivanov A.S., Mindukshev L.V., Bukatin A.S. 2022. Persistent red blood cells retain their ability to move in microcapillaries under high levels of oxidative stress. Commun. Biol. 5, 659.
  13. Раджабова З.Г., Забелинский С.А., Чеботарева М.А., Шуколюкова Е.П., Кличханов Н.К., Кривченко А.И. 2020. Влияние умеренной гипотермии на фосфолипидный состав мембран эритроцитов крыс. Биол. мембраны. 37 (2), 134–148.
  14. Забелинский С.А., Чеботарева М.А., Шуколюкова Е.П., Никитина Е.Р., Кривченко А.И. 2019. Жирнокислотный состав фосфолипидов эритроцитов крысы при стрессе (длительное плавание). Журн. эволюц. биохимии и физиол. 55 (1), 37–42.
  15. Гасасаева Р.М., Каяева А.А., Эседулаева З.Г. 2014. Изменение состояния мембран эритроцитов у студентов, переживающих экзаменационный стресс. Успехи соврем. естествозн. 8, 15–17.
  16. Lopes D., Rey F., Leal M.S., Lillebø A.I., Calado R., Domingues M.R. 2021. Bioactivities of lipid extracts and complex lipids from seaweeds: Current knowledge and future prospects. Mar. Drugs. 19, 686.
  17. Wang B., Chen Z.-S., Jiang Z., Zhang Z. 2023. Editorial: Biological macromolecules from marine organisms: Isolation, characterization and pharmacological activities. Front. Mar. Sci. 10, 1326516.
  18. Cheng-Sánchez I., Sarabia F. 2018. Chemistry and biology of bioactive glycolipids of marine origin. Mar. Drugs. 16 (9), 294–346.
  19. Agatonovic-Kustrin S., Kustrin E., Gegechkori V., Morton D.W. 2019. High-performance thin-layer chromatography hyphenated with microchemical and biochemical derivatizations in bioactivity profiling of marine species. Mar. Drugs. 17(3), 148–160.
  20. Сидорова Ю.С., Зорин С.Н., Петров Н.А., Макаренко М.А., Саркисян В.А., Мазо В.К., Коденцова В.М., Бессонов В.В., Кочеткова А.А. 2015. Физиолого-биохимическая оценка обогащения рациона крыс докозагексаеновой кислотой и астаксантином. Вопр. питания. 5, 46–55.
  21. Alquraan L., Alzoubi K., Hammad H., Rababah S.Y., Mayyas F. 2019. Omega-3 fatty acids prevent post-traumatic stress disorder-induced memory impairment. Biomolecules. 9, 100.
  22. Ламажапова Г.П., Сынгеева Э.В., Козлова Т.С., Дашиева Ж.С. 2017. Разработка липосомальной формы концентрата полиненасыщенных жирных кислот: возможные пути использования при производстве функциональных пищевых продуктов. Вопр. питания. 86 (1), 76–84.
  23. Кушнерова Н.Ф., Фоменко С.Е., Спрыгин В.Г., Момот Т.В. 2020. Влияние липидного комплекса экстракта из морской красной водоросли Ahnfeltia tobuchiensis (Kanno et Matsubara) Makienko на биохимические показатели плазмы крови и мембран эритроцитов при экспериментальном стрессе. Биол. моря. 46 (4), 1–8.
  24. Спрыгин В.Г., Кушнерова Н.Ф., Фоменко С.Е. 2022. Влияние липидного комплекса из морской красной водоросли Ahnfeltia tobuchiensis на метаболические реакции печени при экспериментальном токсическом гепатите. Изв. РАН. Сер. биол. 1, 5–14.
  25. Фоменко С.Е., Кушнерова Н.Ф., Спрыгин В.Г., Другова Е.С., Лесникова Л.Н., Мерзляков В.Ю. 2019. Липидный состав и мембранопротекторное действие экстракта из морской зеленой водоросли Ulva lactuca (L.). Химия растит. сырья. 3, 41–51.
  26. Dhahri M. 2023. Cystoseira myrica: From beach-cast seaweed to fucoidan with antioxidant and anticoagulant capacity. Front. Mar. Sci. 10, 408.
  27. Jaworowska A., Murtaza A. 2023. Seaweed derived lipids are a potential anti-inflammatory agent: A review. Int. J. Environ. Res. Public Health. 20, 730.
  28. Fogacci F., Strocchi E., Veronesi M., Borghi C., Cicero A.F.G. 2020. Effect of Omega-3 polyunsaturated fatty acids treatment on lipid pattern of HIV patients: A meta-analysis of randomized clinical trials. Mar. Drugs. 18, 292.
  29. Bernstein A.M., Ding E.L., Willett W.C., Rimm E.B. 2012. A meta-analysis shows that docosahexaenoic acid from algal oil reduces serum triglycerides and increases HDL-cholesterol and LDL-cholesterol in persons without coronary heart disease. J. Nutr. 142, 99–104.
  30. Terme N., Boulho R., Kucma J.-P., Bourgougnon N., Bedoux G. 2018. Radical scavenging activity of lipids from seaweeds isolated by solid-liquid extraction and supercritical fluids. OCL. 25 (5), 505.
  31. Титлянов Э.А., Титлянова Т.В. 2012. Морские растения стран Азиатско-Тихоокеанского региона, их использование и культивирование. Владивосток: Дальнаука. 377 с.
  32. Хотимченко С.В. 2003. Липиды морских водорослей-макрофитов и трав: структура, распределение, анализ. Владивосток: Дальнаука. 234 с.
  33. Sanina N.M., Goncharova S.N., Kostetsky E.Y. 2004. Fatty acid composition of individual polar lipid classes from marine macrophytes. Phytochemistry. 65 (6), 721–730.
  34. Фоменко С.Е., Кушнерова Н.Ф., Спрыгин В.Г., Другова Е.С., Мерзляков В.Ю., Лесникова Л.Н. 2021. Липидный комплекс из морской бурой водоросли Sargassum pallidum (Turner) C. Agardh как гиполипидемическое и антиоксидантное средство при высокожировой диете в эксперименте. Химия растит. сырья. 4, 381–392.
  35. Фоменко С.Е., Кушнерова Н.Ф., Спрыгин В.Г., Другова Е.С., Лесникова Л.Н., Мерзляков В.Ю., Момот Т.В. 2019. Cравнительное исследование липидного состава, содержания полифенолов и антирадикальной активности некоторых представителей морских водорослей. Физиол. растений. 66 (6), 452–460.
  36. Sanina N.M., Goncharova S.N., Kostetsky E.Y. 2008. Seasonal changes of fatty acid composition and thermotropic behavior of polar lipids from marine macrophytes. Phytochemistry. 69, 1517–1527.
  37. Bligh Е.G., Dyer W.J. 1959. A rapid method of total lipid extraction and purification. Canad. J. Biochem. Physiol. 37 (8), 911–917.
  38. Кушнерова Н.Ф., Спрыгин В.Г., Фоменко С.Е., Рахманин Ю.А. 2005. Влияние стресса на состояние липидного и углеводного обмена печени, профилактика. Гиг. санитар. 5, 17–21.
  39. Новгородцева Т.П., Караман Ю.К., Бивалькевич Н.В., Жукова Н.В. 2010. Использование биологически активной добавки к пище на основе липидов морских гидробионтов в эксперименте на крысах. Вопр. питания. 79 (2), 24–27.
  40. Саратиков А.С., Ратькин А.В., Фролов В.Н., Чучалин В.С. 2004. Влияние гепатопротекторов фосфолипидной природы на токсичность циклофосфана. Вопросы биол., мед. и фармацевт. химии. 2, 43–47.
  41. Меньшиков В.В. 1987. Лабораторные методы исследования в клинике. Справочник. М.: Медицина. 368 с.
  42. Folch J., Less M., Sloane-Stanley G.H. 1957. A simple method for the isolation and purification of total lipids from animal tissue. J. Biol. Chem. 226, 497–509.
  43. Svetashev V.I., Vaskovsky V.E. 1972. A simplified technique for thin layer microchromatography of lipids. J. Chromatogr. 67 (2), 376–378.
  44. Rouser G., Kritchevsky G., Yamamoto A. 1967. Column chromatographic and associated procedures for separation and determination of phosphatides and glycolipids. In: Lipid Chromatographic Analysis. Eds Marinetti G.V. New York: Marcel Dekker. 1, p. 99–162.
  45. Wagner H., Horhammer L., Wolff F. 1961. Thin-layer chromatography of phosphatides and glycolipides. Biochem. Z. 334, 175–184.
  46. Кейтс М. 1975. Техника липидологии. М.: Мир. 221 с.
  47. Vaskovsky V.E., Kostetsky E.Y., Vasendin I.M. 1975. An universal reagent for phospholipid analysis. J. Chromatogr. 114 (1), 129–141.
  48. Amenta J.S. 1964. A rapid chemical method for quantification of lipids separated by thin-layer chromatography. J. Lipid Res. 5 (2), 270–272.
  49. Carreau J.P., Dubacq J.P. 1978. Adaptation of a macro-scale method to the micro-scale for fatty acid methyl transesterification of biological lipid extracts. J. Chromatogr. 151 (3), 384–390.
  50. Christie W.W. 1988. Equivalent chain-lengths of methyl ester derivatives of fatty acids on gas chromatography: A reappraisal. J. Chromatogr. 447, 305–314.
  51. Adibhatla R.M, Hatcher J.F 2008. Phospholipase A2, reactive oxygen species and lipidperoxidation in CNS pathologies. BMB reports. 41, 560–567.
  52. Альбертс Б., Джонсон А., Льюис Д., Рэфф М., Робертс К., Уолтер П. 2013. Молекулярная биология клетки. М.-Ижевск: НИЦ «Регулярная и хаотичная динамика», Институт компьютерных исследований. 808 с.
  53. Leclercq L. 2016. Interactions between cyclodextrins and cellular components: Towards greener medical applications? Beilstein. J. Org. Chem. 12, 2644–2662.
  54. Мухомедзянова С.В., Пивоваров Ю.Н., Богданова О.В., Дмитриева Л.А., Шулунов А.А. 2017. Липиды биологических мембран в норме и патологии (обзор литературы). ISO4. 2 (5), 43–49.
  55. Broncel M., Chojnowska-Jezierska J., Koter-Mikhalak M., Franiak I. 2005. Erythrocyte fluidity in patients with hyperlipidemia during statins therapy. Pol. Arch. Med. Wewn. 113 (6), 531–535.
  56. Шевченко О.Г., Шишкина Л.Н. 2011. Сравнительный анализ состава фосфолипидов эритроцитов крови различных видов мышевидных грызунов. Журн. эволюц. биохимии и физиол. 47 (2), 151–156.
  57. Эндакова Э.А., Новгородцева Т.П., Светашев В.И. 2002. Модификация состава жирных кислот крови при сердечно-сосудистых заболеваниях. Владивосток: Дальнаука. 296 с.
  58. Титов В.Н. 2002. Атеросклероз как патология полиеновых жирных кислот. Биологические основы теории атерогенеза. М.: Фонд «Клиника XXI века». 495 с.
  59. Asztalos I.B., Gleason J.A., Sever S., Gedik R., Asztalos B.F., Horvath K.V. 2016. Effects of eicosapentaenoic acid and docosahexaenoic acid on cardiovascular disease risk factors: A randomized clinical trial. Metabolism. 65 (11), 1636–1640.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Российская академия наук, 2025