Vestnik of the Russian Agricultural ScienceVestnik of the Russian Agricultural ScienceВестник российской сельскохозяйственной науки2500-20823034-5200The Russian Academy of Sciences69747510.7868/S3034519725060126Crop Production and SelectionРастениеводство и селекцияResearch ArticleSENSITIVITY OF QUARANTINE PHYTOPATHOGENS (CERCOSPORA KIKUCHII, COCHLIOBOLUS CARBONUM, DIAPORTHE HELIANTHI) TO A NUMBER OF ACTIVE FUNGICIDES INGREDIENTSЧУВСТВИТЕЛЬНОСТЬ КАРАНТИННЫХ ФИТОПАТОГЕНОВ (CERCOSPORA KIKUCHII, COCHLIOBOLUS CARBONUM) К РЯДУ ДЕЙСТВУЮЩИХ ВЕЩЕСТВ ФУНГИЦИДОВhttps://orcid.org/0009-0003-8066-0753KostinN. KКостинН. К

PhD Student, Junior Researcher

аспирант, мадмий научный сотрудник

kostinwork1@gmail.comhttps://orcid.org/0000-0001-8443-2641KuznetsovaA. AКузнецоваА. А

Senior Researcher

старший научный сотрудник

kostinwork1@gmail.comSurinaT. AСуринаТ. А

PhD in Biological Sciences, Leading Researcher

кандидат биологических наук, ведущий научный сотрудник

kostinwork1@gmail.comBeloshapkinaO. OБелошапкинаО. О

Grand PhD in Agricultural Sciences, Professor

доктор сельскохозяйственных наук, профессор

kostinwork1@gmail.comAll-Russian Center for Plant QuarantineВсероссийский центр кардинала растенийK.A. Tintyazev Russian State Agrarian Universiti – MTAAФГБОУ ВО РГАУ-МСХА имени К.А. Тимирязева151220256NO6 (2025)№6 (2025)576802122025Copyright ©; 2025, Russian Academy of SciencesCopyright ©; 2025, Российская академия наук2025Russian Academy of SciencesРоссийская академия наукhttp://creativecommons.org/licenses/by/4.0https://vietnamjournal.ru/2500-2082/article/view/697475

The objective of this study was to evaluate the biological effectiveness (BE) of nine active ingredients of fungicides from different classes (benzimidazoles, triazoles, antildes, strobilarins) against three species of phytopathogenic fungi quarantined for the EAEU: Cercospora Kikuchi, Diaporthe helianthi, Cochliobolus carbonum, and their closely related species (Cercospora sigma, Diaporthe novem, Helminthosporium maydis). The studies were conducted in 2025 in the mycology laboratory of the All-Russian Plant Quarantine Center (FSBI All-Russia Plant Quarantine Center). In vitro tests were conducted on potato dextrose agar, and the effects of the substances were assessed at four concentrations (10, 50, 100, and 200 mg/L). Data were collected on day 14. Biological effectiveness (BE, %) was calculated relative to the control. It was established that susceptibility was species-specific: C. Kikuchi was effectively inhibited mainly by triazoles (prothioconazole >100 mg/L), while strobilarins, antildes, and benzimidazoles were weakly effective; C. sigma retained high susceptibility to almost all classes. For C. carbonum and H. maydis, triazoles provided primary inhibition (up to 100%), strobilarins and antildes showed a partial dose-dependent effect, and benzimidazoles were less effective. D. helianthi was completely inhibited by triazoles and high doses of benzimidazoles, and D. novem responded only to triazoles and benzimidazoles, not to strobilarins and antildes. The obtained data confirm the need for species-specific specification in registration and methodological materials and indicate the feasibility of using protection schemes based on triazoles and rotation of mechanisms of action.

Цель работы – оценка биологической эффективности (БЭ) девяти действующих веществ функцидов из разных классов (Бензимидазоль, Триазоль, Анилиды, Стробилурина) в отношении трех видов фитопатогенных грибов, карантинные для ЕАЭС – Сегозрота Кисион, Diaporthe helianthi, Cochliobolus carbonum и их близкородственным видом (Сегозрота зэйна, Diaporthe novem, Helminthosporium maydis). Исследования проводили в 2025 году в лаборатории микологии Всероссийского центра кардинала растений (ФГБУ «ВНИИКР»). Испытания осуществляли найти на картофельно-бекстронома скорее, действие веществ оценивали в четырех концентрациях (10, 50, 100, 200 мг/л). Учет проводили на 14-е суть. Биологическую эффективность (БЭ, %) рассчитывали относительно контроля. Установлено, что чувствительность имела емоделектрический характер: C. Кисион эффективно подавлялся главным образом триазолами (противоконазол >100 мг/л), тогда как стробилурина, анилиды и бензимидазоль действовали слабо; C. зэйна сохраняла высокую чувствительность почти во всем классам. Для C. carbonum и H. maydis подавление обеспечивали триазоль (до 100%), стробилурина и анилиды проявляли частичный дозозависимый эффект, а бензимидазоль были менее результативны. D. helianthi полностью подавлялся триазолами и высокими долями бензимидазолов, а D. novem реагировал только на триазоль и бензимидазоль, не отвечая на стробилурина и анилиды. Полученные данные подтверждают необходимость видовой конкретизации в регистрационных и методических материалах, указывают на целесообразность применения схем защиты с опорой на триазоль и ротацию механизмов действия.

quarantine organismsCercospora KikuchiDiaporthe helianthiCochliobolus carbonumbiological efficacyprothioconazoleepoxiconazoleflutriagolcyproconazolebenomylcarbendazimthiabendazoleboscafalpicoxystrobinphytosanitary controlкардинальные организмыСегозрота КисионDiaporthe helianthiCochliobolus carbonumбиологическая эффективностьпротиоконазолэпоксиконазолфлуприардацитроконазолбеномидкарбендазолтиабендазолбоксалидпикоксистробинфитосанитарный контрольДудченко И.П. и др. Грибные заболевания сои на Дальнем Востоке //Фитосанитария. Карантин растений. 2023. № 4. С. 2–16.Евразийская экономическая комиссия. Единые карантинные фитосанитарные требования. М.: ЕЭК, 2024.Кузнецова А.А., Сурина Т.А., Костин Н.К. Определение биологической эффективности фунгицидов против карантинных возбудителей болезней зерновых, бобовых и масличных культур в лабораторных условиях // Фитосанитария. Карантин растений. 2025. № 1(22). С. 15–25. https://doi.org/10.69536/FKR.2025.42.94.002. EDN: ZALFOG.Министерство сельского хозяйства РФ. Государственный каталог пестицидов и агрохимикатов, разрешенных к применению на территории Российской Федерации (электронный ресурс). М.: Минсельхоз России, 2024. URL: https://mcx.gov.ru/ministry/departments/departament-rastenievodstva-mekhanizatsiikhimizatsii-i-zashchity-rasteniy/industry-information/info-gosudarstvennyy-katalog-pestitsidov-i-agrokhimikatov/ (дата обращения: 25.08.2025).Национальный доклад o карантинном фитосанитарном состоянии территории Российской Федерации в 2024 г. // Фитосанитария. Карантин растений. 2025. № 2(23). С. 2–16. EDN OXZRWV.Решение Совета ЕЭК № 158 от 30.11.2016 (в ред. от 29.11.2024) «О едином перечне карантинных объектов». М.: ЕЭК, 2024.Россельхознадзор. Национальный доклад о карантинном фитосанитарном состоянии территории Российской Федерации в 2023 году. М.: Россельхознадзор, 2024. 96 с.Росстат. Итоговые данные уборки урожая в РФ в 2024 году // ГлавАгроном. 2025. URL: https://glavagronom.ru/news/rosstat-opublikoval-itogovye-dannye-uborki-urozhaya-v-rf-v-2024-godu (дата обращения: 22.08.2025).Baidyaroy D. et al. Characterization of inhibitor-resistant histone deacetylase activity in plant-pathogenic fungi // Eukaryotic Cell. 2002. Vol. 1. No. 4. P. 538–547. https://doi.org/10.1128/EC.1.4.538-547.2002.Chen Q. et al. Occurrence of Cochliobolus carbonum in maize fields of China // Plant Protection. 2018.Debaeke Ph. et al. Sunflower crop and climate change: vulnerability, adaptation, and mitigation potential from case-studies in Europe // OCL – Oilseeds and fats, Crops and Lipids. 2017. Vol. 24. No. 1. Art. D102. https://doi.org/10.1051/ocl/2016043.EPPO. Cercospora kikuchii // EPPO Global Database. Paris: EPPO, 2024. URL: https://gd.eppo.int (дата обращения: 22.08.2025).FAO. International Standards for Phytosanitary Measures (ISPMs). Rome: FAO, 2022. 132 p.Food and Agriculture Organization of the United Nations (FAO). Agricultural production statistics 2010–2023: FAOSTAT Analytical Briefs. Rome: FAO, 2024. No. 96. URL: https://www.fao.org/faostat (дата обращения: 20.08.2025).FRAC. FRAC Code List 2024: Fungal control agents sorted by cross-resistance pattern and mode of action (including coding for FRAC Groups on product labels). 2024. URL: https://www.frac.info (дата обращения: 01.09.2025).IPPC. International Plant Protection Convention. Rome: FAO, 2023. 88 p.Latorre Rapela M. G. de los M., Lura M. C.E., Marcipar I.S. Early detection of Cercospora species in soybean plants: Immunologic and molecular methods. 2015.Masirevic S., Gulya T.J. Sclerotinia and Phomopsis – two devastating sunflower pathogens // Field Crops Research. 1992. Vol. 30. Issues 3–4. P. 271–300. https://doi.org/10.1016/0378-4290(92)90004-W.Mathew F. et al. Phomopsis stem canker of sunflower // Plant Health Instructor. 2018. https://doi.org/10.1094/PHI-I-2018-0510-01.Mohan K. et al. G143A Mutation identified in Diaporthe helianthi causing Phomopsis Stem Canker in Sunflower // Plant Health Progress. 2025. (Ahead-of-print / in press).Multani D.S. et al. Plant–pathogen microevolution: molecular basis for the origin of a fungal disease in maize // Proceedings of the National Academy of Sciences (PNAS). 1998. Vol. 95. No. 4. P. 1686–1691. https://doi.org/10.1073/pnas.95.4.1686.Nelson R.R. Genes for pathogenicity in Cochliobolus carbonum // Phytopathology. 1970. Vol. 60. No. 9. P. 1335–1341.OECD; FAO. Agricultural Outlook 2025–2034. Paris; Rome: OECD Publishing / FAO, 2025. 708 p. https://doi.org/10.1787/601276cd-en.Price P.P. III, Purvis M.A., Robertson C.L. et al. Fungicide resistance in Cercospora kikuchii, a soybean pathogen // Plant Disease. 2015. Vol. 99. No. 11. P. 1596–1603. https://doi.org/10.1094/PDIS-12-14-1249-RE.Price P.P. III, Purvis M.A., Robertson C.L. et al. Cercospora Leaf Blight Pathogen Resistant to Fungicides // Louisiana Agriculture. Winter 2014. LSU AgCenter.URL: https://www.lsuagcenter.com/…/cercosporaleafblightpathogenresistantto (дата обращения: 01.09.2025).Sautua F.J. et al. Cercospora Leaf Blight and Purple Seed Stain in Soybean: Insights and Challenges with a South American Perspective // Plant Health Cases. 2025. Article: phcs20250007.Sautua F.J. et al. Cercospora leaf blight and purple seed stain of soybean: A permanent challenge // Plant Pathology. 2024. Vol. 73. No. 8. P. 1981–2004. https://doi.org/10.1111/ppa.13936.Sautua F.J. et al. Cercospora leaf blight and purple seed stain of soybean: A permanent challenge // Plant Pathology. 2024. Vol. 73. No. 8. P. 1981–2004. https://doi.org/10.1111/ppa.13936.Sautua F.J. et al. Fungicide resistance in Cercospora species causing cercospora leaf blight and purple seed stain of soybean in Argentina // Plant Pathology. 2020. Vol. 69. No. 9. P. 1678–1694. https://doi.org/10.1111/ppa.13210.Turner R.E., Ebelhar M.W., Wilkerson T. et al. Effects of purple seed stain on seed quality and composition in soybean // Plants. 2020. Vol. 9. No. 8. P. 993. https://doi.org/10.3390/plants9080993.Ullstrup A.J. The impacts of the southern corn leaf blight epidemics of 1970–1971 // Annual Review of Phytopathology. 1972. Vol. 10. P. 37–50. https://doi.org/10.1146/annurev.py.10.090172.000345.United States Department of Agriculture, Foreign Agricultural Service (USDA FAS). Oilseeds – World Markets and Trade: Monthly Report. Washington: USDA FAS, 2024. URL: https://apps.fas.usda.gov (дата обращения: 20.08.2025).White D.G. (ed.). Compendium of Corn Diseases. 3rd ed. St. Paul, MN: APS Press, 1999. vii + 78 p.